DAPI染色原理及使用說明
DAPI 是一種能夠與DNA強力結合的熒光染料。它結合到雙鏈DNA小溝的AT堿基對處，一個DAPI分子可以占據三個堿基對的位置。結合到雙鏈DNA上DAPI分子的熒光強度提高大約20倍，常用與熒光顯微鏡觀測，根據熒光的強度可以確定DNA的量。另外，因為DAPI可以透過完整的細胞膜，它可以用于活細胞和固定細胞的染色。在熒光顯微鏡觀察下，DAPI染劑是利用紫外光波長的光線激發。單獨DAPI的最大吸收波長為340nm，最大發射波長為488nm；當DAPI與雙鏈DNA結合時，最大吸收波長為364nm，最大發射波長為454nm（10 mM Tris pH7.0，100 mM NaCl，10 mM EDTA），其發散光的波長范圍含蓋了藍色至青綠色。DAPI也可以和RNA結合，但產生的熒光強度只有與DNA結合的熒光強度的1/5，其發散光的波長范圍約在500nm左右。
使用說明（僅供參考）
1. 配制工作液：用雙蒸水或PBS稀釋母液，配制成所需要的工作的濃度（0.5-10 μg/mL），工作液可于4 ℃保存6個月。
2. 固定的細胞或組織染色：對于固定的細胞或組織樣品，固定后，適當洗滌去除固定劑。DAPI染色通常在其他染色的最后進行。如果不需要進行其它染色，則直接進行DAPI 染色。
a）對于貼壁細胞或組織切片：加入適量DAPI染色液，覆蓋住樣品即可。
對于懸浮細胞：至少加入待測染色樣品體積3倍的染色液，混勻。室溫放置3-5分鐘。
b）吸除DAPI染色液，用TBST、PBS或生理鹽水洗滌2-3次，每次3-5分鐘。
c）直接在熒光顯微鏡下觀察或封片后熒光顯微鏡下觀察。激發波長360 nm，發射波長460 nm。
3. 活細胞或組織染色：
a）細胞培養物中加入適量DAPI染色液，約1/10細胞培養基體積，必須充分覆蓋住待染色的樣品。通常對于六孔板一個孔需加入1 mL染色液，對于96孔板一個孔需加入100 μL染色液。
b）在 37 ℃培養細胞 10～20 分鐘。
c）用 PBS或合適的緩沖液洗細胞兩次。
d）直接在熒光顯微鏡下觀察或封片后熒光顯微鏡下觀察。激發波長360 nm，發射波長460 nm。
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